Экспериментальная модель баллонирования верхнечелюстной пазухи кролика после нанесения хирургической травмы

Актуальность. В статье рассматриваются особенности баллонирования верхнечелюстной пазухи кролика после нанесения хирургической травмы.

Материалы и методы. В эксперименте использовались физиодиспенсер, турбинный наконечник, дисковые фрезы, брюшистый скальпель, кровоостанавливающий зажим, анатомический пинцет, биодеградируемая нить, баллонный тампон, аппарат лазерной допплеровской флуометрии ЛАКК-М.

Результаты. В результате эксперимента отработана методика нанесения хирургической травмы передней стенки верхнечелюстной пазухи, установка баллонного катетера в пазуху через носовые ходы. Оценена возможность изучения микроциркуляции в верхнечелюстной пазухе. Проведены макро- и микроскопические исследования комплекса тканей верхнечелюстных пазух кроликов (n = 3) массой 3200 ± 600 г в местах контакта баллона с зоной хирургической травмы.

Заключение. Полученные данные подтверждают целесообразность использования кролика массой 3200 ± 600 г в качестве модели для изучения влияния баллонирования верхнечелюстной пазухи после нанесения хирургической травмы. Результаты исследования актуальны для челюстно-лицевой хирургии и оториноларингологии.

1. Карпов ОЭ, Епифанов СА, Балин ВН, Апостолиди КГ. Хирургическое лечение больных с травмой назоорбитоэтмоидального комплекса в условиях гибридной операционной. Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н.И. Пирогова. 2014; 9(2):48-52. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=272854182

2. Пискунов СЗ, Пискунов ИС, Мезенцева ОЮ, Абраменко МА, Левченко АС, Пономарева М.Н. Анатомические и морфологические особенности носа и околоносовых пазух кролика. Российская ринология. 2015;23(3):36-41. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=25440093

3. Шустова ВМ. Анатомия скелета головы кролика. Теоретические и прикладные основы ветеринарной науки. 2024:384-386. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=67919492&selid=67919625

4. McGoldrick P, Joyce PI, Fisher EM, Greensmith L. Rodent models of amyotrophic lateral sclerosis. Biochim Biophys Acta. 2013;1832(9):1421-1436. doi: 10.1016/j.bbadis.2013.03.012

5. Mapara M, Thomas BS, Bhat KM. Rabbit as an animal model for experimental research. Dent Res J (Isfahan). 2012;9(1):111-118. doi: 10.4103/1735-3327.92960

6. Schanaider A, Silva PC. Use of animals in experimental surgery. Acta Cir Bras. 2004;19(4):441-447. doi: 10.1590/S0102-86502004000400014

7. Макарова МН, Макаров ВГ. Использование кроликов в доклинических исследованиях. Лабораторные животные для научных исследований. 2023; 6(3):18-43. doi: 10.57034/2618723X-2023-03-02

8. Рыбакова АВ, Макарова МН, Макаров ВГ. Использование кроликов в доклинических исследованиях. Международный вестник ветеринарии. 2016;(4):113-117. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=27594552

9. Bosze ZS, Houdebine LM.Application of rabbits in biomedical research: a review. World Rabbit Sci. 2006;14(1):1-14. doi: 10.4995/wrs.2006.712

10. Pekow CA Basic Experimental Methods in the Rabbit. In: Suckow MA, Stevens KA, Wilson RP, editors. he Laboratory Rabbit, Guinea Pig, Hamster, and Other Rodents. London: Academic Press; 2012:243-258. doi: 10.1016/B978-0-12-380920-9.00010-9